总胆固醇(TC)检测试剂盒(COD-***双试剂比色法)

检测试剂盒实验经验分析：要保证移液的准确性，误差不能超过2%。可用水和天平">电子天平进行校正。校正方法自己放狗吧，但有专业人员进行矫正。要配备20ul、50ul、100ul、1000ul和排各一支（靠，基本是废话了）。吸取不同的液体后，要更换头。即使是吸取标准品时（应该是特别是！）。要在实验前1小时将检测试剂盒从冰箱中取出，使各种试剂都恢复到室温，以使结果更稳定（这个是容易忽视的！）。实验时，要使底物避光保存。用吸取液体时速度不能太快，以免产生气泡而使吸取量不准确。检测试剂盒如为有菌操作，则主张冰冻保存。总胆固醇(TC)检测试剂盒(COD-***双试剂比色法)

弱酸-弱碱型缓冲溶液（即共轭酸碱缓冲溶液）、酸式盐缓冲溶液、强酸或强碱溶液。在一些特殊情况下也使用混合体系的缓冲溶液（两种pKa相近的共轭酸碱缓冲溶液混合而成）。大家比较熟悉的是共轭酸碱缓冲溶液，例如，HAc-NaAc、HF-NH4F、NH3-NH4Cl。其实，酸式盐也可作为缓冲溶液，因为酸式盐的pH值大多是恒定的，随其浓度增减的变化不大，例如，NaHCO3溶液在1.0M至0.01M之间，其pH值几乎都在8左右（理论值为8.3），同样可以抵抗溶液中产生的少量强酸、强碱（或外加），保持溶液的pH值恒定或变化微小。强酸、强碱溶液也能缓冲滴定过程中产生的少量强酸或强碱，保持溶液的pH值变化很小，故强酸强碱也可作为广义的pH缓冲溶液（以前的分析化学教材就是这样分的），例如，EDTA络合滴定铋，需另外加入一定量的0.1mol/L硝酸溶液，就是为了增强溶液对滴定中产生的H+的缓冲作用。标准蛋白质溶液(BSA,10mg/ml)液体试剂分散度大，吸收快。

检测试剂盒操作注意事项：实验中不用的板条应立即放回包装袋中，密封保存，以免变质。严格按照说明书中标明的时间、加液量及顺序进行温育操作。洗涤酶标板时应充分拍干，不要将吸水纸直接放入酶标反应孔中吸水。试剂应按标签说明书储存，使用前恢复到室温。稀稀过后的标准品应丢弃，不可保存。所有液体组分使用前充分摇匀。加入试剂的顺序应一致，以保证所有反应板孔温育的。加入试剂的顺序应一致，以保证所有反应板孔温育的时间一样。使用干净的塑料容器配置洗涤液。使用前充分混匀检测试剂盒里的各种成份及样品。

检测试剂盒操作注意事项：检测试剂盒保存在2-8℃，使用前室温平衡20分钟。从冰箱取出的浓缩洗涤液会有结晶，这属于正常现象，水浴加热使结晶完全溶解后再使用。实验中不用的板条应立即放回自封袋中，密封（低温干燥）保存。标准品稀释液即可视为阴性对照或者空白；预处理后的样本无需稀释，直接取10μL加样即可。严格按照说明书中标明的时间、加液量及顺序进行温育操作。所有液体组分使用前充分摇匀。底物B对光敏感，避免长时间暴露于光下。避免用手接触，有毒。实验完成后应立即读取OD值。科研实验中试剂取用应注意事项：视线与量筒内液体的凹液面的低处保持水平。

校准液标示值往往是按其基质偏差修正的，所以标示值并非实际值。校准液、质控血清通常是经过处理的混合人或动物血清，这种制备物在特定分析系统中往往与人新鲜血清反应性不同而产生基质偏差。如总胆固醇测定基质效应研究指出：校准液酶法测定回收结果偏低可达5%~7%。甘油三酯测定，有人主张选用双试剂方法消除内源性甘油，这个方法是可行的，但忽视了一个化学平衡理论。因为所有的酯在水溶液中都不是简单地以酯的形式存在，而是以水解与酯化相平衡的形式存在。在一个平衡体系中，如果去除游离甘油，这个平衡就向生成甘油方向移动，甘油三酯就会重新水解，生成新的甘油，达到新的平衡，因此样品与R1试剂孵育时间越长，测得甘油三酯值就越低。甘油三酯测定，不只要去除游离甘油，而且还要克服样本含量真实性发生的变化，试剂中必须加入甘油激酶，并且延迟时间要标准化。所以，一些试验项目在消除内源性物质干扰的同时，会带来样品含量真实性的变化。检测试剂盒保存：部分试剂保存于-20℃，部分试剂保存于2-8℃，详细以标签上的标明为准。ELISA封闭液(1%明胶)

检测试剂盒控制洗刷量和洗刷次数的另一种方法是参与过量的洗刷液。总胆固醇(TC)检测试剂盒(COD-***双试剂比色法)

已知准确浓度的溶液，在容量分析中用作滴定剂，以滴定被测物质。如果试剂符合基准物质的要求 (组成与化学式相符、纯度高、稳定)，可以直接配制标准溶液，即准确称出适量的基准物质，溶解后配制在一定体积的容量瓶内。可由下式计算应称取的基准物质的重量W：W=ΜV·基准物质的摩尔质量。式中Μ和V分别为所需配制的溶液的摩尔浓度和体积。利用上式可计算出标准溶液的浓度。如果试剂不符合基准物质的要求，则先配成近似于所需浓度的溶液，然后再用基准物质准确地测定其浓度，这个过程称为溶液的标定。总胆固醇(TC)检测试剂盒(COD-***双试剂比色法)