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    ③待分离胶完全聚合后，倾去其顶部的去离子水，用滤纸将水吸干。④配制4％浓缩胶5mL，加TEMED5μL、10％APS50μL，混匀立即灌胶，灌至顶部，并垂直插入Teflon齿梳，室温静置20min待胶聚合。⑤待胶完全聚合后拔出梳子，将凝胶置于电泳槽中，加入电泳缓冲液，用电泳缓冲液冲洗上时间就是金钱，效率就是生命唯有惜时才能成功，唯有努力方可成就样孔以去除气泡。2电泳①取各个处理组蛋白提取液，调整蛋白浓度为6μg/μL，和等体积2上样缓冲液混合，即为上样液。②将上样液于100℃沸水中煮沸5min，使蛋白变性，冰上骤冷，3000转/min离心1min。③每孔加上样液15μL，留一孔加10μL预染的Marker。加满电泳缓冲液，盖上槽盖，接通电源，先用80v恒压电泳，约20min，当指示剂溴酚蓝进入分离胶后改用110v恒压电泳，当指示剂到达距凝胶下端约处时关闭电源，取出胶板。3转印蛋白及免疫检测①在电泳即将结束前，预先将PVDF膜浸泡在甲醇中15s，然后用ddH2O漂洗2min，浸泡于转移缓冲液中5min后开始后续操作。②在水中撬胶，修胶后将胶浸泡于转移缓冲液中平衡15min。③按黑面（负极）→海绵→滤纸→胶→PVDF膜→滤纸→海绵→红面（正极）的顺序制备转膜“三明治”。

磷酸化蛋白的WB第三方检测有哪些方法呢？50 度水浴 30min 后，用 TBST 洗 5 分钟 ,3 次即可去除已孵育结合的抗体。许多人会建议 55 度水浴 30min。Strip solution 是用来去除已结合的抗体，但也会去除部分的蛋白，导致蛋白信号变弱。我本人经实验发现水浴时有时温度不稳定，温度定为 55 度时往往其温度容易超过，导致较多的蛋白也被去除，故建议温度设为 50 度 30min ，既能有效去除已结合的抗体，又比 55 度更能保护蛋白。Strip 时一定要注意： membrane 一定要完全泡在 strip solution 中（可用较硬的塑料膜封好），然后要完全浸入水中，使受热均匀 。这一点很重要，要不然，随后压出来的总蛋白也好，内标也好就会不均一，无法进行比较。我曾将同一张membrane 用我提供的方法 strip 了 3 次，分别压不同的抗体（因为有时候蛋白分子量很接近），效果都不错。真实第三方检测，就找瑞普信！

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