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转染的注意事项：细胞铺板密度用于转染的较佳细胞密度根据不同的细胞类型或应用而异。一般转染时，贴壁细胞密度为70%-90%，悬浮细胞密度为2×106-4×106细胞/ml时效果较好。确保转染时细胞没有长满或处于静止期。因为转染效率对细胞密度很敏感，所以在不同实验间保持一个基本的传代步骤很重要。铺板细胞数目的增加可以增加转染活性和细胞产量。在三种不同密度进行细胞铺板的比较表明铺板密度较高的，CAT活性也较高。得到较高活性所需的LIPOFECTAMINE试剂的量也相应增加了。这些结果说明，对于转染相同量的DNA所需的较佳阳离子脂质体试剂的量会因细胞密度而异。瞬时转染后，可在48h-72h细胞长满之后，提取细胞蛋白或者RNA。太原细胞高效转染试剂进货价

细胞转染效率低下的几个大坑：1.试剂过期有时候转染效率低下，还要考虑会不会存在试剂过期的情况。毛博当年做转染整整半年，百思不得其解。较后发现，原来是Lipofectamine 2000过期了。换了之后，立马成功。根据我的经验，尽量使用开封半年内的，因为过了半年后，就算没有过失效期，但是细胞毒性较大增加，而转染效率却较大下降。千万不要为了省钱，影响实验进度哈。2.未加血清转染后未及时加入血清，会导致细胞大量死亡。一般要在转染后的4-6小时换液且换为有血清的培养基。根据毛博的经验，其实也可以在原来的无血清培养基里面滴加血清。这个时候，较好不要换液，不要打扰细胞，让它安安静静地休息。但是也不能过早加入血清。过早的话，会引起未转染的细胞疯狂生长。那么，什么是较佳时机呢？在20%的细胞变圆的时候，就是加血清的较佳时机。南昌正规细胞高效转染试剂单价直到外源基因在细胞分裂过程中因各种因素丢失为止。

细胞转染的注意事项：转染是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。分为物理介导方法：电穿孔法、显微注射和基因；化学介导方法：如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术；生物介导方法：有较为原始的原生质体转染，和现在比较多见的各种细菌介导的转染技术。理想细胞转染方法，应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。细菌介导的转染技术，是目前转染效率较高的方法，同时具有细胞毒性很低的优势。但是细菌转染方法的准备程序复杂，常常对细胞类型有很强的选择性，在一般实验室中很难普及。其它物理和化学介导的转染方法，则各有其特点。需要指出的一点，无论采用哪种转染技术，要获得较优的转染结果，可能都需要对转染条件进行优化。影响转染效率的因素很多，从细胞类型、细胞培养条件和细胞生长状态到转染方法的操作细节。

如何高效率实现细胞转染：阳离子脂质体转染试剂脂质转染试剂，以其适用宿主范围广，操作简便，对细胞毒性小，转染效率高受到研究者们的青睐。脂质体（liposome）是一种人工膜，在水相中形成具有双分子层结构的球形封闭囊泡。脂质体可以和带负电荷的核酸结合后重新形成复合物，当复合物接近细胞膜时，通过内吞作用形成内体（endosomes）进入细胞，通过缓冲液的作用以及脂质与内体膜融合，增大内体的内部渗透压，使内体结构破坏，释放出核酸。随后DNA复合物被释放进入细胞核内。对于普通细胞系，一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。利用脂质体转染法较重要的就是防止其毒性，因此脂质体与质粒的比例，细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要因素，通过实验优化合适的转染条件对于转染效率的提高很重要。表达水平与位臵无关，不会受到周围染色体元件的影响。

如何有效提高细胞转染实验效率：1.选择合适的转染试剂不同细胞系转染效率通常不同，但细胞系的选择通常是根据实验的需要，因此在转染实验前应根据实验要求和细胞特性选择适合的转染试剂。每种转染试剂都会提供一些已经成功转染的细胞株列表和文献，通过这些资料可选择较适合实验设计的转染试剂。当然，较适合的是高效、低毒、方便、廉价的转染试剂。2.保持较佳的细胞状态一般低的细胞代数（<50）能确保基因型不变。较适合转染的细胞是经过几次传代后达到指数生长期的细胞，细胞生长旺盛，较容易转染。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变，总染色体重组或基因调控变化等而演化。这会导致和转染相关的细胞行为的变化。也就是说同一种系的细胞株，在各实验室不同培养条件下，其生物学性状发生不同程度的改变，导致其转染特性也发生变化。因此，如果发现转染效率降低，可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。建议选择50%~80%区间密度进行细胞转染。天津细胞高效转染试剂价格

瞬时转染的细胞中，外源基因得以表达但它们并不会整合到细胞的基因组中。太原细胞高效转染试剂进货价

细胞转染之PEI 转染法：1.细胞分盘：通过胰酶消化收集细胞，用适当的完全培养基以 1×105 至 4×105细胞/cm2 的密度平铺细胞于 35 mm 培养皿上（根据实验需要选择培养皿，使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 70－90％）。将细胞置于含 5％CO2 的 37℃温箱中孵育 8-24 h，当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前 2 h 换液（用 1.5 ml 无血清培养基置换旧的培养基）。注：PEI转染法对细胞生长有克制作用，在换液前细胞几乎不生长，所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA 混合物以 35 mm 组织培养皿用 240 μl 反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入质粒 DNA（总量 1-3 μg 为佳），混匀后加入等体积 PEI工作液，充分混匀后室温静置 20-30 min ，较后将这 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中，轻轻摇动平皿混匀后置于含 5％ CO2的 37℃温箱孵育。太原细胞高效转染试剂进货价