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EndoS糖苷内切酶S（Endo-S）的特异性主要体现在其对糖蛋白的糖链结构的识别和切割能力上。以下是Endo-S的一些关键特异性特点：1.**糖链识别**：Endo-S能够特异性识别糖链结构中的某些特定序列或结构，尤其是N-连接糖链的壳二糖重要结构。2.**切割位点**：Endo-S在糖链的特定位点进行切割，通常是在N-乙酰葡糖胺（GlcNAc）和天冬酰胺之间的β-N-糖苷键。3.**不影响抗原性**：Endo-S的切割位点选择性高，不会破坏糖蛋白的抗原决定簇，因此在某些应用中可以保持糖蛋白的免疫原性。4.**应用多样性**：Endo-S可以用于多种糖蛋白的去糖基化，包括抗体和其他具有N-连接糖链的蛋白质。5.**研究和药物开发**：在研究糖蛋白的结构和功能时，Endo-S提供了一种工具来研究糖链对蛋白质性质的影响。此外，在药物开发中，Endo-S用于制备糖链定点ADC化合物，通过精确控制药物与抗体的连接点，提高药物的疗效和减少副作用。6.**兼容性**：Endo-S对多样化的LacNAc修饰显示出良好的兼容性，可以接受不同生物正交基团、荧光基团等衍生物作为底物，实现抗体糖基化修饰。7.**高效性**：Endo-S在催化糖链转移或切割反应中表现出高效性，有助于实现高效获得功能修饰的糖工程抗体。One Step RT-qPCR SYBR Green Kit 是一种用于实时荧光定量PCR的试剂盒，它结合了反转录和PCR扩增步骤。GRGDSPC
检测重组EGFP（增强型绿色荧光蛋白）的活性和稳定性通常涉及一系列生物化学和分子生物学实验方法。以下是一些常用的检测方法：1.**SDS-PAGE电泳**：-通过SDS-PAGE电泳分析EGFP的纯度和分子量。-观察是否有蛋白质降解或聚合的迹象。2.**WesternBlot**：-使用特异性的GFP抗体进行Westernblot，以检测EGFP蛋白的存在和大小。-可以评估EGFP的表达水平和纯度。3.**荧光光谱分析**：-使用荧光光谱仪测量EGFP的激发和发射光谱。-评估荧光强度和比较大激发/发射波长，以确定其荧光特性。4.**流式细胞仪分析**：-如果EGFP融合蛋白表达在细胞中，可以使用流式细胞仪分析细胞群体的荧光强度。-这有助于评估EGFP的表达水平和细胞内分布。5.**荧光显微镜观察**：-在荧光显微镜下观察EGFP的亚细胞定位和表达模式。-通过时间序列成像，可以评估EGFP在活细胞中的动态变化和稳定性。6.**热稳定性分析**：-通过逐渐升高温度并测量荧光强度的变化，可以评估EGFP的热稳定性。-热稳定性差的EGFP可能会在高温下迅速失去活性。7.**光稳定性测试（光漂白实验）**：-通过持续光照并监测荧光强度的下降（光漂白），可以评估EGFP的光稳定性。Recombinant Human IL-5 R alpha/CD125 Protein,His-Avi TagE1在ATP的存在下激发泛素分子，通过一个硫酯键将泛素的C末端甘氨酸残基与E1酶的活性连接起来。
确保N末端His标签的泛素蛋白在实验中的活性和稳定性，需要考虑以下几个关键因素：1.**储存条件**：按照生产商的建议，将重组泛素蛋白冻干粉储存在-25~-15℃的条件下，以保持其稳定性和活性。2.**避免反复冻融**：多次冻融会降低蛋白质的稳定性和活性。建议在使用后将剩余的蛋白质分装并储存在推荐的条件下。3.**复溶条件**：按照产品说明，使用无菌蒸馏水或推荐的缓冲液将蛋白质复溶至适当的浓度。通常建议添加0.1%BSA以增加蛋白质的溶解度和稳定性。4.**使用前离心**：在使用前，将蛋白质溶液短暂离心，以确保所有组分都沉积在底部，避免取样时的不均匀性。5.**工作浓度和体积**：根据实验设计，将蛋白质稀释至工作浓度，并尽量使用小体积以减少蛋白质的降解。6.**避免蛋白降解**：在实验过程中，使用蛋白酶抑制剂以防止蛋白降解酶对重组泛素蛋白的降解。7.**避免氧化**：在蛋白质的储存和使用过程中，避免氧化，可以通过添加抗氧化剂如DTT或TCEP。8.**避免污染**：使用无菌技术操作，确保实验器材和环境的清洁，避免微生物污染。9.**操作环境**：在4℃或冰上进行操作，以减少蛋白质降解和非特异性相互作用。
重组增强型绿色荧光蛋白（RecombinantEnhancedGreenFluorescentProtein,EGFP）是一种用于生物科学研究的工具。以下是重组EGFP的一些特点和应用：1.**高荧光强度**：EGFP比野生型GFP具有更强的荧光，这使得它在成像和检测时更为敏感和有效。2.**改进的折叠效率**：EGFP在生理温度（如37℃）下的折叠效率更高，这有助于在细胞内快速形成成熟的荧光蛋白。3.**单一激发峰**：与野生型GFP相比，EGFP具有单一的激发峰，这简化了成像条件的设置，并提高了信号的稳定性。4.**适合多种生物系统**：EGFP可以用于多种生物系统，包括细菌、酵母、植物和哺乳动物细胞。5.**多功能性**：EGFP可以作为报告基因用于基因表达分析，也可以作为融合标签用于蛋白质定位和动态研究。6.**非糖基化**：在大肠杆菌中表达的重组EGFP是非糖基化的，这有助于减少翻译后修饰的复杂性。7.**纯度高**：重组EGFP通常具有高纯度，适合用于各种生物化学和分子生物学实验。8.**稳定性**：EGFP的荧光稳定性好，适合长时间观察和成像。9.**分子量**：重组EGFP的分子量约为26.9kDa，由239个氨基酸构成。在泛素化过程中，首先泛素激起酶E1（Uba1或其他）在ATP的存在下激起泛素分子，形成E1-泛素硫酯中间体。
PreScissionProtease（PSP）在去除融合蛋白标签时，对目的蛋白的纯度和活性的影响通常是积极的，具体表现在以下几个方面：1.**小化污染**：由于PSP具有高度的特异性，它在特定的肽键处切割，从而减少了非特异性切割可能导致的蛋白质片段，这有助于保持目的蛋白的纯度。2.**减少蛋白质修饰**：PSP的特异性切割有助于避免在切割过程中对目的蛋白引入额外的修饰，如磷酸化或糖基化，这些修饰可能会影响蛋白质的活性和稳定性。3.**保持活性**：如果融合蛋白标签的设计和切割位点选择得当，PSP切割后的目的蛋白通常能够保持其原有的生物活性。切割位点通常位于标签和目的蛋白之间，这样切割后不会在目的蛋白上留下额外的氨基酸，从而减少了对蛋白质结构和功能的影响。4.**提高纯度**：PSP切割后，可以通过亲和层析等方法将标签、PSP以及未切割的融合蛋白分离，从而获得高纯度的目的蛋白。5.**便于后续分析**：去除标签后的目的蛋白更易于进行后续的质谱分析、晶体学研究或其他生物化学分析，因为去除了可能干扰分析的标签部分。6.**稳定性**：在某些情况下，融合蛋白的标签可能有助于稳定目的蛋白的构象，因此在去除标签后，需要适当处理以维持目的蛋白的稳定性。Cas12a不仅具有顺式切割活性，还具备独特的反式切割活性，这使得它能够无差别地裂解附近的单链DNA。Rat Fractalkine/CX3CL1
Probe qPCR Mix (2×) 支持多重qPCR，即在单个反应中同时检测多个靶标基因 。GRGDSPC
PreScissionProtease（PSP）是一种由人鼻病毒14型的3C蛋白酶（humanrhinovirus(HRV)type143Cprotease）和GST组成的融合蛋白。它具有以下特点：1.**特异性识别**：PreScissionProtease能在低温下（4°C）特异识别短肽Leu-Glu-Val-Leu-Phe-Gln-Gly-Pro，并在Gln和Gly氨基酸残基之间进行酶切。2.**依赖结构**：底物的识别和切割不仅依赖于融合蛋白的一级结构，还依赖于融合蛋白的二级和三级结构。3.**分离GST标签**：它可以特异性的将pGEX-6P系列等载体表达出的带有酶底物识别多肽序列融合蛋白的GST标签进行分离。4.**表达宿主**：本品由大肠杆菌中重组表达，并以无菌液体形式提供。5.**物理性质**：分子量约为46kDa，物理外观为无菌无色液体。6.**储存缓冲液**：25mMTris-HCl（pH8.0），150mMNaCl，1mMEDTA，5mMDTT，50%（V/V）Glycerin。7.**酶切缓冲液**：10×酶切缓冲液为500mMTris-HCl（pH7.0），1.5MNaCl，10mMEDTA，10mMDTT。8.**纯度**：经SDS-PAGE及HPLC分析，纯度大于95%。9.**酶活定义**：在5℃条件下反应16小时，能够切割10µg的GST标签的融合蛋白达90%以上所需的酶量定义为一个活性单位。GRGDSPC